L'Oïdium du concombre
1. Qu’est-ce que l’oïdium ?
L’oïdium est une maladie très courante dans les cultures de concombre, en particulier sous serre. Chez le concombre, l’oïdium est principalement causé par le champignon Podosphaera xanthii. C’est généralement l’espèce la plus fréquemment observée en culture sous serre.
Ce champignon vit à la surface des feuilles. Il ne pénètre pas à l’intérieur de la plante, mais prélève lesnutriments dont il a besoin sur celle-ci.
Cependant, ce n’est pas la seule espèce responsable. Une autre espèce peut également provoquer la même maladie : Golovinomyces orontii (anciennement appelée Erysiphe cichoracearum).
2. Quels sont les symptômes ?
Au début, de petites taches blanches apparaissent sur les feuilles. Ces taches s’agrandissent progressivement et finissent par se rejoindre, formant une couche poudreuse. Les feuilles commencent ensuite à jaunir, puis finissent par se dessécher. Lorsque la maladie est fortement développée, la plante perd de nombreuses feuilles et s’affaiblit.
Les producteurs remarquent généralement la maladie lorsqu’ils observent une couche blanche et poudreuse sur les feuilles, comme si celles-ci avaient été saupoudrées de farine.
Comparaison visuelle des symptômes de l'oïdium sur différentes variétés de concombre
3. Quel est le processus de développement du champignon ?
P. xanthii se développe dans une plage de températures relativement large, avec un risque maximal autour de 24 à 27 °C. Une humidité relative élevée est particulièrement importante pour la germination des conidies et l’infection. Dans des conditions favorables, la germination peut commencer après environ 3 heures, tandis que des périodes prolongées de forte humidité (> 12 h) peuvent augmenter le risque d’infection.
Après l’infection, des conditions relativement plus sèches peuvent favoriser la sporulation et la dispersion des conidies.
Le développement du champignon commence lorsque de minuscules spores se déposent à la surface des feuilles. Ces spores germent et commencent à se développer en surface. Le champignon se propage rapidement et produit de nouvelles spores en seulement quelques jours. Ces nouvelles spores se dispersent ensuite vers d’autres feuilles et d’autres plantes. La maladie peut donc progresser très rapidement lorsque les conditions sont favorables.
En résumé : l’oïdium germe dans des conditions de forte humidité, mais se propage plus rapidement lorsque les conditions sont chaudes et sèches. Les nuits humides peuvent déclencher l’infection, tandis que les journées chaudes et sèches favorisent la progression de la maladie.
4. Comment se transmet-il ? Comment apparaît-il ?
L’oïdium se propage principalement par voie aérienne. Les spores sont très légères et peuvent facilement être transportées par le vent ou par les mouvements d’air à l’intérieur de la serre. La maladie apparaît souvent d’abord sous forme de petites taches blanches, généralement sur les feuilles les plus âgées, avant de se propager à l’ensemble de la culture.
5. Quel est l’impact sur le rendement et la qualité des fruits ?
Lorsque l’oïdium recouvre les feuilles, la plante ne peut plus produire correctement son énergie, car la photosynthèse est réduite. La plante dispose alors de moins d’énergie pour assurer la croissance des fruits. Par conséquent, les fruits peuvent être plus petits, la production peut diminuer et le cycle de culture peut se terminer plus tôt que prévu.
6. En cas d’infection, comment limiter sa propagation ?
Une fois l’oïdium apparu, il est important d’agir rapidement. Le retrait des feuilles infectées permet de réduire la source de spores. Il est également important d’améliorer la ventilation afin d’éviter de propager le champignon par les mains, les vêtements ou les outils.
Les traitements doivent être appliqués rapidement, avant que la maladie ne devienne trop importante. Toutes les mesures de protection des cultures doivent être mises en œuvre conformément aux réglementations nationales et européennes applicables, notamment aux principes de la protection intégrée des cultures (IPM) prévus par la directive 2009/128/CE et par le plan français Écophyto. Les producteurs doivent consulter les étiquettes des produits homologués et demander conseil à des agronomes qualifiés avant d’appliquer tout traitement.
7. Comment nettoyer la serre après une infection ?
À la fin de la culture, tous les résidus végétaux doivent être soigneusement éliminés, car le champignon peut survivre sur ceux-ci. La structure de la serre, les tuyaux et les outils doivent être nettoyés et désinfectés. Une bonne hygiène entre deux cultures permet de commencer le cycle suivant avec un risque d’infection réduit.
8. Existe-t-il une période plus sensible ? Pourquoi ?
L’oïdium devient généralement plus agressif lorsque la plante est pleinement développée et en phase de production des fruits. À ce stade, le couvert végétal est dense, la circulation de l’air est réduite et les conditions d’humidité sont plus favorables au champignon. La maladie peut alors se propager plus facilement et plus rapidement.
9. Bonnes pratiques pour prévenir l’oïdium
La prévention commence par le choix de variétés résistantes et par une bonne gestion du climat de la serre. Une bonne circulation de l’air est très importante : les plantes ne doivent donc pas être trop denses. Une surveillance régulière de la culture permet également de détecter le problème rapidement. L’élimination des vieilles feuilles et le maintien d’une culture propre contribuent également à réduire le risque.
10. Comment les niveaux de résistance sont-ils déterminés ?
Les niveaux de résistance sont déterminés à l’aide de biotests standardisés réalisés dans des conditions contrôlées, au stade plantule ou sur plante adulte, puis comparés aux standards de référence du secteur publiés par Euroseeds, l’organisation qui regroupe les associations semencières nationales. Euroseeds maintient des tableaux de résistance harmonisés afin que les producteurs puissent comprendre ce que signifie chaque niveau.
Aujourd’hui, deux niveaux sont distingués : résistance intermédiaire (IR) et haute résistance (HR).
Les catégories IR et HR constituent un cadre standardisé utile. Cependant, au sein de chaque catégorie, les variétés peuvent présenter des différences de comportement au champ en fonction des conditions environnementales et des agents pathogènes. Ce cadre ne permet pas de classer les variétés entre elles au sein d’un même niveau. Ainsi, deux variétés toutes deux déclarées IR peuvent présenter des performances différentes au champ en fonction des conditions locales, du climat et de la pression du pathogène.
Les niveaux de résistance peuvent donc varier au sein des catégories IR et HR. Les producteurs doivent évaluer les performances des variétés dans leurs propres conditions locales et ne pas se fier uniquement à la catégorie de résistance indiquée. C’est également la raison pour laquelle, en pratique, des variétés présentant une revendication commerciale identique ou différente peuvent néanmoins montrer des niveaux de sensibilité différents à l’oïdium.
11. Comment positionnons-nous notre revendication en matière de résistance ?
Nous adoptons volontairement une approche prudente concernant nos revendications de résistance. Notre démarche consiste à aligner étroitement nos revendications commerciales sur les performances observées sur le terrain, afin que les producteurs puissent planifier leurs stratégies de gestion des maladies en toute confiance.
Nous préférons inciter les producteurs à rester prudents en matière de prévention et de contrôle des maladies plutôt que de les encourager à s’appuyer excessivement sur la résistance génétique, au risque d’être confrontés à une infection inattendue d’oïdium lors d’une saison à forte pression, ce qui pourrait mettre leurs revenus en danger.
Parallèlement, la résistance à l’oïdium peut encore progresser. Nos programmes de sélection cherchent continuellement à améliorer les performances de résistance aux maladies pour les producteurs. La distinction entre IR et HR reflète l’état actuel des connaissances scientifiques, et les recherches en cours visent à renforcer davantage la résistance au fil du temps.
Pour les producteurs, le principal point à retenir est le suivant : les revendications de résistance reflètent des essais standardisés réalisés dans des conditions contrôlées et ne doivent pas être interprétées comme une garantie de performance. Les résultats réels peuvent varier en fonction du climat local, de la pression du pathogène et des pratiques agronomiques. Les conditions locales, le climat et la population spécifique du pathogène influencent tous la manière dont la résistance génétique s’exprime en culture.
Les déclarations concernant les progrès futurs en matière de sélection reflètent les orientations actuelles de la recherche et ne constituent pas des engagements quant à des résultats spécifiques.
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Références
• McGrath, M.T. (2017). Powdery Mildew of Cucurbits. Cornell University Extension.
• McGrath M. T. (Fungicide Efficacy Tables, Cornell).
• Agrios, G. N. (2005). Plant Pathology (5e éd.). Elsevier.
• Perez-Garcia et al. (2009). “The powdery mildew fungus Podosphaera xanthii…” Molecular Plant Pathology.
• Zitter, T. A., Hopkins, D. L., Thomas, C. E. (1996). Compendium of Cucurbit Diseases. APS Press.
• Glawe, D. A. (2008). “The powdery mildews: a review…” Annual Review of Phytopathology.
• Lebeda, A. & Cohen, Y. (2011). “Cucurbit powdery mildews”. European Journal of Plant Pathology.
• Oerke, E. C. (2006). “Crop losses to pests”. Journal of Agricultural Science.
• UC IPM (University of California). Powdery Mildew of Cucurbits.
• UC IPM Fungicide guidelines.
• EFSA / principes généraux de protection intégrée des cultures.
• Cornell Vegetable MD Online (McGrath).
• Agrios (principes généraux de gestion des maladies).
• Agrios (principes généraux relatifs à l’utilisation des fongicides et à la résistance des plantes hôtes).
• Jarvis, W. R. (1992). Managing Diseases in Greenhouse Crops.
• FAO (Organisation des Nations Unies pour l’alimentation et l’agriculture). Recommandations relatives à
l’hygiène des serres.
• UC ANR (University of California Agriculture & Natural Resources).
• Définitions de la résistance utilisées par les entreprises semencières (p. ex. terminologie standard de
l’International Seed Federation – ISF).
• ISF (2017). Disease Resistance Terminology.
• Lebeda et al. (2016). “Cucurbit powdery mildew resistance”. Euphytica.
• Brent, K.J. & Hollomon, D.W. (2007). Fungicide Resistance in Crop Pathogens.
• Trecate et al. (2019). “Effect of temperature on infection and development of powdery mildew on cucumber”.
Plant Pathology, 68, 1165–1179. DOI: 10.1111/ppa.13038.